Polybrene(10mg/mL)

CatalogNumber：LE110

01/Polybrene聚凝胺LE110產品概述

　　Polybrene（聚凝胺，hexadimethrinebromide）是一種多聚陽離子聚合物，廣泛用于逆轉錄病毒及慢病毒介導的基因轉染，是一種常用的促感染試劑，能夠顯著提高病毒與細胞的接觸及感染效率，其作用機理可能是通過中和細胞表面唾液酸與病毒顆粒之間的靜電排斥從而促進吸附作用。同時，Polybrene也常用于哺乳動物細胞的DNA轉染實驗以增強脂質體的轉染效率。Polybrene也是一種有名的抗肝素劑（肝素拮抗劑），常用來生產非特異性凝集的紅細胞。它還參與到低分子量DNA的轉化中。此外，Polybrene也多用于蛋白測序，因為小劑量的Polybrene在自動測序分析可明顯改善多肽的降解現象。PVDF膜加入polybrene還能提高膜的親和性。

本產品以溶液形式提供，粉末用0.9%NaCl配制成10mg/mL的溶液，并用0.22μm濾膜過濾除菌。使用時一般按1:1000-1:5000稀釋，依細胞種類不同稀釋比例不同，具體使用濃度請查閱相關文獻。

02/產品組分

03/Polybrene 聚凝胺 10mg/mL 保存條件：冰袋（wetice）運輸。-20℃保存，有效期24個月。建議分裝保存，避免反復凍融。

04/產品特點

　　即用型試劑，無需進行試劑配置，簡單方便。

　　無菌制劑，可直接加入細胞使用。

05/Polybrene聚凝胺LE110實驗步驟

　　慢病毒感染（LentiviralInfection）實驗步驟如下：

　　1.包裝慢病毒并測定慢病毒滴度，通過病毒滴度和MOI計算目的細胞感染所需的病毒量。

　　2.實驗前一天，將生長狀態良好的目的細胞消化計數后稀釋至1-3×105/mL，加入12孔板，1mL/孔。放入37℃，5%CO2培養箱中培養。

　　?懸浮細胞不需要提前一天接種，實驗前將細胞計數接種后，直接加入病毒混合液即可。

　　3.配制慢病毒+polybrene+培養基混合液。polybrene一般使用濃度為2-10μg/mL，但對某些細胞（如末端分化的神經元，DC細胞等）毒性較大，初次使用建議先做毒性測試。

　　4.吸去12孔板中目的細胞的培養基，加入3中配制的慢病毒混合液，放入37℃，5%CO2培養箱中繼續培養。

　　?感染懸浮細胞或半懸浮細胞，則需采用平角離心轉染法，即將適量的病毒液加入細胞培養板后，封好口，放入平角離心機中，低速（200xg）離心?1h?，然后放入培養箱中繼續培養。

　　?若實驗條件有限，沒有平角離心機，可用離心管代替，將細胞吸入離心管中，進行低速離心，去掉大部分上清，加入適量的病毒液，室溫放置?15min，然后將細胞和病毒液同時吸出轉入培養板中繼續培養。

　　5.病毒感染16h后更換為新鮮培養基繼續培養。

　　6.病毒感染36-48h后，可加入篩選培養基進行穩定細胞株篩選，或采用熒光顯微鏡、流式細胞術、westernblot、qPCR等方法檢測目的基因表達情況。

06/適用范圍

　　Polybrene目前廣泛用于逆轉錄病毒及慢病毒介導的基因轉染，是一種常用的促感染試劑，能夠顯著提高病毒與細胞的接觸及感染效率。

07/注意事項

　　1.Polybrene聚凝胺10mg/mL對某些細胞（如末端分化的神經元、DC細胞）毒性較大，初次應用建議先做毒性測試。

　　2.本說明書中提供的Polybrene聚凝胺10mg/mL使用濃度范圍僅供參考，具體使用濃度請參考相關文獻。

　　3.為了您的健康安全，請規范操作，穿戴實驗服與手套開展實驗。

　　4.所有慢病毒操作均需在生物安全柜(BSL2級)中進行。

　　5.本產品僅供科研使用，請勿用于臨床診斷及治療。

08/Polybrene 聚凝胺 10mg/mL實驗案例分析

　　1.提前一天使用10cm細胞培養皿培養ViralStarsLentivirusPackagingCellLine（CL110001），待細胞密度為75%左右開始包裝慢病毒。

　　2.使用ViralStarsLPLentivirusPackagingKit（LP110-10）進行慢病毒包裝。取10μL慢病毒包裝輔助質粒混合物（PackagePlasmidMix）加入到2mL離心管中，加入2.5μL表達GFP的對照質粒（ControlPlasmid），輕輕混合，加入32μLPolyShooter轉染試劑與質粒混合，室溫孵育3分鐘。

　　3.往上述混合物中加入1.8mL無血清無雙抗的DMEM基礎培養基，輕輕混勻，在室溫下靜置30分鐘，形成轉染試劑-核酸復合物。

　　4.將上述1.8mL轉染試劑-核酸復合物輕輕地逐滴均勻加入10cm皿慢病毒包裝細胞中，輕輕搖動培養皿混勻，置于37℃，5%CO2培養箱中培養產毒。

　　5.轉染24h后，棄去初始病毒上清液，加入10mL新鮮的*培養基(DMEM+10%FBS)至10cm細胞培養皿中，置于37℃，5%CO2培養箱繼續培養。

　　6.轉染48h后，收集病毒上清液，再加入10mL新鮮的*培養基(DMEM+10%FBS)至10cm細胞培養皿中，置于37℃，5%CO2培養箱繼續培養。

　　7.轉染72h后，進行二次病毒上清液收集，與48h收集的上清液混合后，300xg離心10分鐘以除去細胞碎片，0.22μm濾器過濾，使用ViralStarsLCLentivirusConcentrationSolution慢病毒濃縮試劑盒（LC110R）進行20倍濃縮，使用1mLViralStarsLSLentivirusStorageSolution（LS110R）重懸慢病毒顆粒。

　　8.使用上述制備的慢病毒感染目的細胞HEK293T，設置兩組實驗組:(1)病毒+polybrene(10μg/mL)+培養基混合液，(2)病毒+培養基混合液(不添加polybrene)。

　　9.使用熒光顯微鏡觀察綠色熒光蛋白表達情況，并拍照記錄。使用流式細胞術統計GFP陽性細胞數，實驗結果如圖2所示。

圖2:慢病毒(GFP)感染目的細胞HEK293T的過程中是否添加polybrene(10μg/mL)的感染效率對比實驗。

09/其他相關產品